Spanish (pdf)
Article in xml format
Automatic translation
Cited by SciELO 
Cited by Google 
Similars in
SciELO 
Similars in Google 
Permalink
INTRODUCCIÓN
Algunas plantas con propiedades insecticidas se utilizan en el control de plagas agrícolas como alternativa al uso de agroquímicos, los que tienen consecuencias negativas en el agroecosistema y las personas, aumentan el costo de producción, y pueden causar desequilibrios ecológicos al afectar a los enemigos naturales de las plagas y especialmente los ecosistemas acuáticos (Iannacone et al., 2007; Akob and Ewete, 2007; Iannacone y Alvariño, 2010).
Los plaguicidas botánicos se pueden utilizar en conjunto con la fauna benéfica para regular las plagas. Las plantas con estas propiedades deben fomentarse ya que causan un menor impacto ecotoxicológico acuático y terrestre, por lo que el conocimiento de los efectos tóxicos y repelentes de los extractos botánicos sobre organismos acuáticos y la fauna benéfica es indispensable para su utilización (Iannacone et al., 2015). Por otra parte, la demanda creciente de alimentos orgánicos y el uso de los insecticidas locales de origen botánico ha aumentado globalmente (Juárez-Flores et al., 2010; Nuñez et al., 2010).
Saúco Sambucus peruviana HBK (Caprifoliaceae) es una planta andina utilizada por su sombra y valor ornamental, distribuida desde Costa Rica hasta el cono sur, entre 2000 y 4000 msnm. Sus frutos sirven de alimento, su follaje tiene propiedades afrodísiacas y medicinales para el hombre, y su madera es de alta calidad. Los extractos de flores y hojas presentan actividad antimicrobiana (Díaz et al., 2004; Cruz et al., 2011). Los principios activos son taninos, flavonoides, sapo-ninas, esteroides, alcaloides, mucílagos, catequi-nas, quinonas, lactosas, cumarinas y antocianinas (Alvarado-Chávez, 2007; Ruiz et al., 2013; Natividad-Bardales et al., 2014; Torres et al., 2015).
El crustáceo Daphnia magna Straus se utiliza en ensayos para evaluar la toxicidad de xenobióticos (Díaz et al., 2004; APHA, 2012). Este orga nismo es fácil de desarrollar en laboratorio, tiene un ciclo vital corto, representa al zooplancton en estudios ecotoxicológicos y permite determinar el riesgo ambiental acuático (Iannacone et al., 2007; Iannacone et al., 2014).
El gorgojo del maíz, Sitophilus zeamais (Mots-chulsky) (Coleoptera: Curculionidae) es una plaga clave del maíz en almacenamiento, donde causa daño significativo si no se le controla (Rodríguez-Cobos y Iannacone 2012). Se ha evaluado el efecto insecticida de diversas plantas promisorias para el control de este gorgojo (Iannacone y Quispe, 2004; Iannacone et al., 2004; Tapondjou et al., 2005; Nuñez et al., 2010; Fedaku et al., 2012).
Copidosoma koehleri Blanchard es un parasi-toide nativo de Sudamérica con poliembrionía, que actúa especialmente sobre los huevecillos del complejo de polillas de la papa (Keasar y Steinberg, 2008; Segoli et al., 2009). Sobre esta microa-vispa se ha evaluado el efecto tóxico de diversos plaguicidas sintéticos y extractos botánicos (Ian-nacone y Lamas, 2003; Iannacone et al., 2007).
En este trabajo se evaluó el efecto tóxico de preparados en agua y alcohol etílico de hojas, raíces y corteza de S. peruviana en D. magna, S. zea-mais y C. koehleri.
MATERIALES Y MÉTODOS
Los bioensayos se realizaron en el Laboratorio de Ecología y Biodiversidad Animal (LEBA) de la Facultad de Ciencias Naturales y Matemática de la Universidad Nacional Federico Villarreal (UNFV), El Agustino, Lima, Perú.
Material biológico
Sambucus peruviana. La selección de plantas, preparación de las muestras y obtención del polvo seco y extractos botánicos crudos siguieron el protocolo de Iannacone et al. (2014). Las plantas se colectaron en el Distrito de Viques (12°4' S, 75°13' W), Provincia de Huancayo Junín, Perú. Para los tratamientos se utilizaron hojas, corteza y raíces. Para la preparación en seco, las partes de la planta se secaron 96 h en estufa a 37°C. Las hojas secas se pulverizaron en un mortero (Haldenwanger(r)), y las raíces y corteza en un molinillo. Los polvos se pasaron por dos tamices, de 400 y 500 |jm, y se sellaron en frascos de vidrio ámbar para evitar la fotólisis, se rotularon y se mantuvieron en refrigeración hasta los bioensayos (Iannacone et al., 2014).
Los polvos se utilizaron para preparar extractos acuosos de los compuestos hidrosolubles con agua destilada por al menos 7 d con aireación, todos al 20% (concentración referencial máxima), por maceración en agua, cocción e infusión, y un extracto con alcohol etílico. Luego se filtraron con papel Whatman(r) N° 5. En los bioensayos se utilizaron sólo extractos en agua de hasta 72 h desde la preparación, para evitar pérdidas de calidad por microorganismos fúngicos (Iannacone et al., 2014). Todos los tratamientos se hicieron a la temperatu ra del laboratorio.
Daphnia magna. Los ejemplares se obtuvieron de un acuario en el distrito de San Isidro, Lima, Perú, que se llevaron al laboratorio y pusieron en recipientes de 2 L a ~22 ± 2°C, según el procedimiento de Díaz et al. (2004) mientras duraron los bioensa-yos. Solo se utilizaron individuos neonatos (< 24 h) (Iannacone et al., 2014).
Sitophilus zeamais. La crianza de laboratorio se inició a partir de una población de adultos que se obtuvo de maíz desde un mercado del distrito de Surquillo, Lima, Perú, los que se llevaron a enva ses plásticos de 1 L, de 11,5 cm de alto, 10 cm de diámetro de base y 12,5 cm de diámetro superior (Rodríguez-Cobos y Iannacone, 2012), que se man tuvieron en cámara a ~22 ± 2°C para su reproducción y obtener los adultos para los bioensayos. Los experimentos de 3-7 d se hicieron con adultos no sexados escogidos al azar desde la crianza (lannacone et al., 2004; Tapondjou et al., 2005).
Copidosoma koehleri. Los ejemplares se obtuvieron del CIP (Centro Internacional de la Papa), Lima, Perú, y se criaron en laboratorio sobre larvas de Phthorimaea operculella Zeller a 22 ± 2° C y foto-período 12:12 (Iannacone et al., 2007).
Bioensayos con polvos secos. De los envases de crianza se escogieron al azar adultos no sexados de S. zeamais, sobre 10 g de maíz en envases plásticos de 2,5 cm de alto, 2,3 cm de ancho y 3,3 cm de largo), con cuatro repeticiones del tratamiento a la mayor concentración (1,6 g 10 g maíz-1) y un control con agua destilada. Se agregaron los polvos secos en cada repetición, y se pusieron 10 gorgojos en cada envase. Las evaluaciones se hicieron cada 24 h durante 5 d (= 120 h), para determinar el efecto tóxico de los polvos secos sobre el gorgojo (Iannacone et al., 2004). Se calculó el porcentaje de pérdida de peso (Pp) de granos dañados (Ngd) con respecto al total de granos (Ntg) por envase, mediante la fórmula Pp = (Ngd/Ntg)*100*C, donde C es una constante con valor 0,125 si el maíz está almacenado como grano suelto o mazorca sin chalas, como en los bioensayos, o 0,222 si el maíz está almacenado como mazorca con ellas. El bioensayo de toxicidad de polvos secos no se hizo sobre D. magna ni C. koehleri.
Maceración. Los extractos en agua destilada se prepararon a 20 g por 100 mL agua (pH = 7,2; CE = 0,86 dS cm-1; Calcio = 6,17 me L-1; Magnesio = 1,26 men L-1; Potasio = 0,10 me L-1; Sodio = 1,58 me L-1; Nitratos = 0,10 me L-1; Carbonatos = 0,00 me L-1; Bicarbonatos = 3,55 me L-1; Sulfatos = 2,30 me L-1; Cloruros = 2,40 me L-1; RAS = 0,81 me L-1; Boro = 0,50 me L-1; Dureza = 362 mg L-1) y la maceración se hizo por espacio 5 d. Luego se filtró en papel Whatman(r) N° 5).
Para D. magna se utilizaron envases con 100 mL de la solución al 20% de concentración. Se utilizaron individuos-neonatos de hasta 24 h de edad (Iannacone et al., 2014). En cada envase se pusieron cinco individuos más un control sólo con agua potable reposada al menos una semana, con cuatro repeticiones. La toxicidad de los tratamientos se evaluó luego de 48 h.
Para S. zeamais se pusieron 10 g de maíz remojados previamente 5 seg para cada repetición, sobre papel tissue(r) para el secado a temperatura ambiente. Luego se agregaron 10 individuos de cada especie en cada envase plástico con cuatro repeticiones más el control sólo con agua destilada. Las evaluaciones de mortalidad se hicieron cada 24 h durante 5 d (= 120 h), para determinar el efecto de los extractos acuoso.
Para C. koehleri se utilizaron larvas momificadas de 25 d desde la parasitación, y adultos de < 24 h de edad. Se realizaran dos pruebas de toxicidad, por contacto residual y por inmersión.
Toxicidad por contacto residual para adultos. Los adultos de la microavispa se utilizaron para un bioensayo con frascos de vidrio de 2,2 cm de radio y 4 cm de altura, de 12,5 µL, a los que se agregaron las concentraciones con una pipeta con puntas descartables, y luego se esparcieron homogéneamente con hisopos separados sobre la superficie interna. Los viales se secaron a temperatura ambiente por 2 h o alternativamente en estufa a 35°C durante 1 h con sus respetivos tapones de algodón. Los experimentos con C. koehleri se hicieron con adultos < 24 h de edad. Las microavispas se alimentaron hasta 2-3 h antes del tratamiento con solución de sacarosa 1:1. Se utilizaron machos y hembras indistintamente desde los frascos de emergencia de adultos. Estos se consideraron muertos cuando no se posaron sobre el vial y se encontraron en el fondo con las patas hacia arriba, durante 10 s de observación bajo aumento. Tanto el control como los tratamientos utilizaron agua reposada, con cuatro frascos (uno por repetición). Se usaron 20 adultos por cada sustancia evaluada y cinco adultos por repetición más el control. Para los ensayos de toxicidad aguda, los frascos se mantuvieron en condiciones de cría y oscuridad señaladas por Iannacone et al. (2007) y se observó la mortalidad acumulada a varias h desde la exposición. Las lecturas se hicieron siempre cuando la mortalidad en el control fue < 10%.
Toxicidad por inmersión. Las aplicaciones se hicieron sobre larvas momificadas de P. opercu-lella parasitadas por C. koehleri por inmersión de 5 s en los extractos botánicos en placas Petri de plástico. Luego de la inmersión las larvas parasitadas se pusieron 10 min en papel tissue(r) para absorber el exceso de solución y se dejaron secar 1 h a temperatura ambiente. Se trataron 10 larvas parasitadas, que se pusieron en frascos de 1 cm de radio y 5 cm de altura (Iannacone et al., 2007). Las lecturas se hicieron hasta la emergencia cercana al 100% de los adultos de C. koehleri de las larvas momificadas de P. operculella en el control. El porcentaje de emergencia de C. koehleri se calculó contando el número de microavispas emergidas de una larva momificada de P. operculella, dividiéndolo por el número total de cámaras parasitadas (además, se contó el número de adultos formados no emergidos y el número de larvas y pupas de C. koehleri) (Iannacone et al., 2007).
Cocción e infusión acuosa. Se prepararon extractos acuosos por cocción de 20 g de muestra por 100 mL de agua destilada, durante 10 min. Las infusiones de los extractos acuosos se prepararon con 20 g de muestra por 100 mL de agua destilada, hirviendo agua reposada a 100°C y una vez a esta temperatura se retiró el calor y se agregó inmediatamente los extractos hasta que enfriaron. El procedimiento de bioensayo fue el mismo que con la maceración.
Maceración con alcohol etílico. La extracción se hizo con alcohol etílico absoluto, desde una solución madre al 20%, con maceración por 5 d. El procedimiento de bioensayo fue el mismo que para la maceración, más un control extra sólo con alcohol etílico al 20% y otro con agua.
Repelencia. Los efectos de repelencia de los bioensayos contra S. zeamais se evaluaron usando el método del área preferente (McDonald et al., 1970), con papel filtro Whatman N° 1 de 6,2 cm de radio cortado por la mitad (120,76 cm2). Se prepararon diluciones acuosas al 20% de cada tratamiento por maceración, cocción e infusión, y por maceración en etanol. Cada solución se aplicó uniformemente a la mitad del papel filtro a la dosis mayor, y la otra mitad del papel para el control se trató con agua destilada. Los papeles filtros se airearon 10 min para evaporar el solvente, y se pegaron con cinta adhesiva en placas Petri. Luego se pusieron 20 gorgojos adultos no sexados en el centro de la placa, que se mantuvo en condiciones de cría y oscuridad señaladas por Iannacone et al. (2007), con cuatro repeticiones. Los gorgojos presentes, en el área control (Nc) y en el área tratada (Nt) se conta ron a las 2 h. El porcentaje de repelencia (PR) se determinó según la fórmula PR = [(Nc - Nt)/(Nc + Nt)]*100. El porcentaje de repelencia de cada tratamiento se asignó de 0 a V clases de repelen cia (Juliana y Su, 1983): clase 0 (PR < 0,1%), clase I (PR < 0,1-20%), clase II (PR < 20,1-40%), clase III (PR < 40,1-60%), clase IV (PR < 60,1-80%) y clase V (PR < 80,1-100%). También se utilizó el Índice de Repelencia (IR), que clasifica al tratamiento como neutro si el índice es = a 1, atrayente si es >a 1 y repelente si es < 1, según la fórmula IR = 2G /G+P, donde G: porcentaje de insectos en el tratamiento, y P: porcentaje de insectos en el testigo. Se consideraron promisorios los tra tamientos que presentaron 40% de mortalidad (Lagunes, 1994).
Diseño experimental y tratamiento estadísti co. Para D. magna, las pruebas de toxicidad se evaluaron en cinco concentraciones (1,25; 2,5; 5; 10 y 20% de extractos de hojas, corteza y raíces en cuatro tratamientos: maceración, cocción e infusión en agua, y maceración en alcohol etílico, más el control, con cuatro repeticiones, en un diseño de 6 tratamiento en 4 bloques completamente aleatorizados. Las concentraciones letales medias (CL50s) se calcularon con el software Probit versión 1,5 (USEPA, 1993).
Para S. zeamais y C. koehleri, las pruebas de toxicidad se hicieron a una sola concentración del 20% de extractos de hoja, corteza y raíces y cuatro tratamientos: maceración, cocción e infusión en agua, y maceración en alcohol etílico, más el control, con cuatro repeticiones. En el bioensayo con C. koehleri se evaluaron 13 tratamientos x 4 repeticiones en un diseño de bloques completamente aleatorizados. Para S. zeamais solamente se incluyó un tratamiento con polvos secos de hojas, corteza y raíces, con 16 tratamientos x 4 repeticiones. Para el ensayo por inmersión de adultos emergidos, no emergidos y formas larvarias y pupas no emergidas de C. koehleri se utilizó un ANDEVA completamente aleatorizado de 13 tratamientos x 10 repeticiones. Para estabilizar el error de la varianza, la eficacia de los tratamientos se evaluó a través de un modelo aditivo lineal, previa transformación por log(x+1) de los resultados de mortalidad de adultos (%) de S. zeamais, de granos dañados (%) y pérdida de peso (%) del grano de maíz por S. zeamais, de la mortalidad de adultos (%) de C. koehleri, de adultos emergidos, no emergidos y de larvas y pupas de C. koehleri). Los promedios de los tratamientos se separaron con la prueba de Tukey. Los análisis se hicieron con programa estadístico SPSS 21.0 para Windows XP (IBM, 2011)
RESULTADOS
Daphnia magna. A 48 h de la exposición los CL50 para D. magna en g L-1 indican que los cuatro tratamientos con mayor toxicidad fueron la infusión en agua de hojas, la cocción en agua de raíces, la cocción en agua de hojas y la macera-ción en agua de hojas (Tabla 1).
Sitophilus zeamais. No se encontraron diferencias significativas en la mortalidad de S. zeamais entre los 15 tratamientos en base a S. peruviana y el control a las 24 y 48 h desde la exposición (Tabla 2). A las 72 h de la exposición solo se encontraron diferencias en la mortalidad de S. zea-mais entre la cocción de la corteza y el control. A las 96 y 120 h de la exposición, solo el polvo de corteza presentó diferencias significativas con el control. Todos los tratamientos con raíces y hojas no tuvieron efecto en la mortalidad de S. zeamais. Los porcentajes de granos dañados de los tratamientos por maceración, cocción e infusión en agua de la corteza, presentaron los mayores porcentajes de granos dañados, con diferencias significativas con el control (Tabla 3). No se encontraron pérdidas significativas de peso del grano por S. zeamais entre todos los tratamientos en comparación con el control. Las pérdidas de grano de maíz fueron < al 3% de peso. Ninguno de los tratamientos tuvo una repelencia hacia S. zeamais mayor al nivel II (PR < 20,1-40%), clase que sólo se observó en la maceración en etanol de hojas y raíces (Tabla 4). Tres tratamientos fueron atrayentes (25%) y nueve repelentes (75%). El tratamiento más repelente fue el de maceración en etanol de raíces.
Tabla 1 Valores de CL50 de los extractos de hoja, corteza y raíz de Sambucus peruviana sobre la pulga de agua Daphnia magna a 48 h de exposición. Table 1. LC50 values of leaf, bark and root extracts of Sambucus peruviana on the water flea Daphnia magna at 48 h of exposure.
Tabla 2 Efecto tóxico de diferentes tratamientos de hoja, corteza y raíz de Sambucus peruviana sobre la mortalidad del gorgojo del maíz (Sitophilus zeamais) hasta 120 h de exposición. Table 2. Toxic effect of different treatments of leaf, bark and root of Sambucus peruviana on the mortality of maize weevil (Sitophilus zeamais) up to 120 h of exposure.
Copidosoma koehleri. El ensayo por contacto residual en adultos de C. koehleri presentó diferencias entre la infusión de raíces y el control entre 3 y 48 h desde la exposición (Tabla 5). También a las 48 h de exposición, los extractos de maceración en etanol de la corteza y en agua de raíces causaron mortalidades de C. koehleri mayores al control.
También se encontraron diferencias entre los tratamientos de los adultos emergidos con maceración en agua de la corteza, infusión en agua de raíces, maceración en agua de raíces y maceración en agua de hojas y el control (Tabla 6).
DISCUSIÓN
Daphnia magna. El rango de CL50 observado para D. magna con los extractos de S. peruviana en el presente trabajo fue amplio (0,44 - 22,8 g L-1). El CL50 menor a las 48 h se obtuvo con la infusión de hojas. Este crustáceo se ha utilizado para evaluar muchas sustancias en ambientes acuáticos en Perú (Núñez y Hurtado, 2005; Iannacone et al., 2008). La actividad en estos am bientes de los extractos vegetales se relaciona con algunos factores intrínsecos y extrínsecos, tales como la especie y variedad de la planta, período de recolección, parte cosechada y forma de preparación, extracción y uso en el campo y calidad físico-química del recurso acuático (Ian-nacone et al., 2007; 2008).
Sitophilus zeamais. A 96 y 120 h desde la exposición, sólo el polvo de corteza presentó diferen cias significativas en la mortalidad de S. zeamais en comparación con el control, aunque no sobrepasó el 30%. Para que una planta con propiedades insecticidas sea promisoria para el control de plagas de granos almacenados la mortalidad debe ser > al 40% (Lagunes, 1994; Akob y Ewe-te, 2007). Aunque en todos los tratamientos, la mortalidad de S. zeamais aumentó con el tiempo de exposición, al igual que en Silva et al. (2003) y Tapondjou et al. (2005), los resultados para el control de plagas no se consideran auspiciosos para el uso de esta planta como un insecticida botánico contra plagas de granos almacenados.
Tabla 3 Granos dañados y pérdida de peso del grano de maíz por gorgojo del maíz (Sitophilus zeamais) con tratamientos de hoja, corteza y raíz de Sambucus peruviana hasta 120 h de exposición. Table 3. Damaged grains and weight loss of corn grain by maize weevil (Sitophilus zeamais) under different treatments of leaf, bark and root of Sambucus peruviana up to 120 h of exposure.
Tabla 4 Índice, porcentaje y clase de repelencia de los tratamientos en base a Sambucus peruviana sobre el gorgojo del maíz. Table 4. Index, percentage, and repellence class of the treatments with Sambucus peruviana on the maize weevil.
Tabla 5 Efectos tóxicos por contacto residual de los extractos de hoja, corteza y raíz de Sambucus peruviana sobre adultos de Copidosoma koehleri de 3 h a 48 h de exposición. Table 5. Residual toxic effects by contact of leaf, bark and root extracts of Sambucus peruviana on adults of Copidosoma koehleri from 3 h to 48 h exposure.
Aunque la mayoría de los bioensayos con S. zeamais se hacen con hojas pues éstas concentran los compuestos activos (Torres et al., 2015), muchos insecticidas de origen vegetal se obtienen también de tallos, raíces, flores y semillas (Issakul et al., 2011; Fedaku et al., 2012). En el presente estudio el tratamiento de corteza en polvo causó la mayor mortalidad de S. zeamais, incluso después del tiempo establecido para los bioensayos (55% a las 196 h), resultado que indica que recién después de ese período desde la exposición se obtendrían resultados que armonizarían con la propuesta de Lagunes (1994) de mortalidad > de 40% para ser considerado un tratamiento botánico promisorio. Se ha observado mortalidad significativa de S. zeamais por acción de polvos secos de diversas plantas a bajas concentraciones (Silva et al., 2003; 2005; Salvadores et al., 2007). El polvo de la corteza del saúco pudiera estar actuando sobre S. zeamais como veneno estomacal y barrera física (Fedaku et al., 2012). Así, según los criterios de Nuñez et al. (2010), para proteger 100 kg de semillas de cereal se requerirían 16 kg de polvo y cerca de 20 kg de corteza de S. peruviana. Esta concentración parecería impráctica, si no se mezcla con otros compuestos químicos en polvo como el carbona to de calcio (Nuñez et al., 2010).
Tabla 6 Efecto tóxico de tratamientos en base a Sambucus peruviana por inmersión de estados de desarrollo de Copidosoma koehleri. Table 6. Toxic effect of different treatments with Sambucus peruviana by immersion of Phthorimaea operculella mummified larvae on Copidosoma koehleri.
En otro trabajo con polvo de hojas de S. peruviana, Iannacone et al. (2005) no obtuvieron mortalidad de S. zeamais hasta con una concentración máxima de 20%. Luego, Iannacone et al. (2006) hicieron ensayos con extractos etanólicos de frutos maduro y verdes de S. peruviana, y tampoco obtuvieron mortalidad de S. zeamais, aunque las hojas y los frutos de saúcos evaluados se obtuvieron en el distrito de Pueblo Libre, Lima, Perú (entre 85 y 90 msnm), mientras que S. peruviana es una especie de zonas altoandinas (entre 2 000 y 4 000 msnm), y el cambio de ambiente puede producir menos metabolitos que aquellas plantas que se encuentran en su hábitat natural. Nuñez et al. (2010) y Pinto et al. (2016) indican que la variabilidad natural de los principios activos o metabolitos secundarios principales con propiedades insecticidas de las plantas dependen de la zona geográfica, estado fenológico y época del año. Otras plantas evaluadas sí han resultado tóxicas o repelentes (Iannacone et al., 2015).
El porcentaje de granos dañados de los tratamientos de maceración y cocción en agua, e infusión en agua de la corteza fue mayor que en el testigo, resultados que indican una ligera atracción de S. zeamais al grano de maíz con estos tres extractos, los que así no serían utilizables como repelentes. Al evaluar los resultados obtenidos con papel filtro, los tratamientos que fueron atrayentes para S. zeamais fueron la cocción e infusión de hojas y la maceración de raíces de S. peruviana. Los resultados de repelencia de S. zeamais frente a los extractos fueron diferentes entre los granos almacenados de maíz y el papel filtro.
La pérdida de peso del grano por acción de S. zeamais fue muy escasa (3%) y sin diferencias entre los tratamientos y el control. Los efectos tóxicos o repelentes de los fitoquímicos hacia S. zeamais dependen de numerosos factores, entre los que se encuentran la composición química y la susceptibilidad del insecto (Cruz et al., 2011). Según la escala de Juliana y Su (1983), el poder repelente del saúco es muy bajo, no mayor al nivel II (Tapondjou et al., 2005). En general, en nuestro estudio los extractos no tuvieron efectos repelentes significativos contra el gorgojo del maíz, a pesar que el 75% de los tratamientos en Pinto et al. (2016) presentó un índice de repelencia < 1.
Silva et al. (2003) recomiendan voltear una vez al mes los envases de almacenamiento para homogeneizar el polvo entre los granos de maíz y favorecer el control del gorgojo del maíz. El uso de extractos y polvos del saúco, una planta endémica de la zona andina, sería una alterna tiva de prevención cara y poco sostenible como insecticida y repelente para el Perú, debido a que las cantidades necesarias para su uso masivo podrían afectar a esta especie en su ambiente natural.
Copidosoma koehleri. La infusión y maceración en agua de raíces de S. peruviana produjeron efectos residuales por contacto en adultos de C. koehleri a 48 h de la exposición. Según Iannacone et al. (2015), los resultados obtenidos en bioensa-yos ecotoxicológicos con plaguicidas en laboratorio sobre enemigos naturales que no son el objetivo del control químico sirven como referencia para orientar la selección de ellos en programas de manejo integrado de plagas. Aunque los tratamientos no superaron el 25% de mortalidad de la microavispa C. koehleri, el uso en control de plagas de los extractos en infusión y maceración en agua de raíces no sería muy compatible con el control biológico en caso de ser éste utilizado en MIP, a pesar que los componentes fitoquímicos del saúco no dañarían muy pronunciadamente a los adultos de este parasitoide. En comparación, extractos hexánicos de Schinus molle L. y Lantana camara L. han causado una mortalidad de C. koehleri > 50% a las 48 h de la exposición (Iannacone y Lamas, 2003).
Sin embargo, al evaluar los efectos subletales como la emergencia de adultos y en las larvas y pupas no emergidas de C. koehleri con hoja, los tratamientos en base a extractos de saúco podrían causar un efecto dañino. Aunque las larvas y pupas del parasitoide se encuentran protegidas por el cuerpo momificado de la larva hospedera, algunos principios activos pueden penetrar en su interior y causar la muerte del parasitoide en sus fases larvarias y de pupa de desarrollo, que tienen una cutícula relativamente aún no endurecida (Longley, 1999).
Los resultados con 12 preparados en base al saúco sobre D. magna y el parasitoide C. koehleri pueden ser ventajosos para las evaluaciones re-gulatorias en un posible registro de S. peruviana como plaguicida botánico en el Perú y para la selección de formulaciones con efectos plaguicidas para su integración holística en el MIP (Iannacone et al., 2006). Sin embargo, se requiere más investigación para evaluar los efectos secundarios contra las fases del ciclo biológico de ambos invertebrados, así como determinar el efecto de estos preparados de S. peruviana en la germinación de granos almacenados.
CONCLUSIONES
El polvo de corteza y la cocción en agua de corteza de S. peruviana debido a su efecto insecticida y repelente fueron los tratamientos más efectivos contra S. zeamais, y los extractos de hojas y raíces presentaron los mayores efectos en el ámbito acuático representado por D. magna y en el control biológico por C. koehleri.
