Histotypic organization of the rat retina in vitro

Summary

Retinae from two- and three-day-old rats were explanted in plasma clots and grown in vitro with the flying coverslip method. After seven to seventeen days in culture, the retinal tissue was fixed with aldehydes and osmium tetroxide and embedded for examination with the electron microscope. Study of cross sections (perpendicular to the coverslip) revealed a histotypic pattern of organization, especially in the thicker regions of the explants. Layering of cells quite similar to that in the intact retina was seen to develop from the relatively primitive, explanted retinal epithelium. However, each layer contained fewer cells than its counterpart in vivo. All major neuronal cell types were distinguished by their location and cytological characteristics. Development of the saccules of sensory cell outer segments was observed to occur in vitro by an infolding of the plasma membrane. Synaptic ribbon complexes developed to the mature form in the outer plexiform layers, while conventional synapses were numerous in the inner plexiform layers. Synaptic ribbons were also seen in bipolar cell axons in the inner plexiform layers. Amacrine and ganglion cells in these regions were relatively sparse. A survey of posterior regions of noncultured three-day-old rat retinae showed no synapses of any sort; therefore the synapses in the cultures formed in vitro. The retina is recommended for studies of synaptogenesis in tissue culture, for it offers several advantages over expiants from other areas of the neuraxis, including a clear layering pattern, many identifiable cell processes with characteristic synaptic relationships between them, and a well-defined sequence of developmental events.

Zusammenfassung

Netzhäute von 2–3 Tage alten Ratten wurden in Plasma auf Deckgläsern in Rollerröhrchen zur Kultur angesetzt. Nach 7–17 Tagen in vitro wurden die Kulturen mit Aldehyden und Osmiumsäure fixiert und für elektronenmikroskopische Untersuchung weiterverarbeitet. Gewebsquerschnitte (senkrecht zum Deckglas) zeigten histotypische Organisation, besonders in den dickeren Abschnitten der Explantate. Die Schichtung der Zellen entwickelte sich ganz ähnlich derjenigen in der Retina in situ aus dem relativ primitiven ausgepflanzten Netzhautepithel, jedoch enthielten die verschiedenen Schichten weniger Zellen als in der Retina in vivo. Alle Hauptnervenzelltypen konnten auf Grund ihrer Lokalisation und ihrer cytologischen Merkmale unterschieden werden. Die Entstehung von membranösen Lamellen in den Außengliedern der Sinneszellen konnte als Einfaltung der Plasmamembran beobachtet werden. Synaptische Bandkomplexe in ausgereifter Form wurden in der äußeren plexiformen Schicht nachgewiesen, während konventionelle Synapsen in der inneren plexiformen Schicht häufig angetroffen wurden. Synaptische Bänder waren ebenfalls in den Axonen bipolarer Zellen in der inneren plexiformen Schicht nachweisbar. Amakrine und Ganglienzellen waren in diesen Regionen ziemlich selten vertreten. Da die Untersuchung von nicht kultivierten Netzhäuten drei Tage alter Tiere keinerlei Synapsen zeigte, wird geschlossen, daß die Synapsen in den Kulturen in vitro entstanden sein müssen. Die Netzhaut stellt ein günstiges Modell für die Synaptogenese in vitro dar, indem sie verschiedene Vorzüge vor Explantaten aus anderen Regionen des Zentralnervensystems aufweist, nämlich eine klare Schichtung, zahlreiche identifizierbare Zellfortsätze mit charakteristischen synaptischen Beziehungen und eine wohl definierte Folge von Entwicklungsvorgängen.